Сворачивание белков - Protein folding

Белок до и после сворачивания
Результаты сворачивания белка

Сворачивание белка - это физический процесс, с помощью которого белковая цепь транслируется в ее естественную трехмерную структуру , обычно в «свернутую» конформацию, благодаря которой белок становится биологически функциональным. Посредством быстрого и воспроизводимого процесса полипептид сворачивается в свою характерную трехмерную структуру из случайного клубка . Каждый белок сначала существует в виде развернутого полипептида или случайной спирали после того, как он транслируется из последовательности мРНК в линейную цепь аминокислот . На этом этапе полипептид лишен какой-либо стабильной (долговечной) трехмерной структуры (левая часть первого рисунка). По мере того как полипептидная цепь синтезируется рибосомой , линейная цепь начинает складываться в свою трехмерную структуру.

Сворачивание многих белков начинается еще во время трансляции полипептидной цепи. Аминокислоты взаимодействуют друг с другом, образуя четко определенную трехмерную структуру, свернутый белок (правая часть рисунка), известный как нативное состояние . Результирующая трехмерная структура определяется аминокислотной последовательностью или первичной структурой ( догма Анфинсена ).

Правильная трехмерная структура важна для функционирования, хотя некоторые части функциональных белков могут оставаться развернутыми , поэтому важна динамика белков . Неспособность свернуться в нативную структуру обычно приводит к образованию неактивных белков, но в некоторых случаях неправильно свернутые белки имеют модифицированную или токсичную функциональность. Считается, что некоторые нейродегенеративные и другие заболевания возникают в результате накопления амилоидных фибрилл, образованных неправильно свернутыми белками. Многие аллергии вызваны неправильным сворачиванием некоторых белков, потому что иммунная система не вырабатывает антитела к определенным структурам белков.

Денатурация белков - это процесс перехода из свернутого состояния в развернутое . Это случается при кулинарии , ожогах , протеинопатиях и в других ситуациях.

Продолжительность процесса сворачивания сильно варьируется в зависимости от интересующего белка. При изучении вне клетки самым медленным сворачивающимся белкам требуется много минут или часов для сворачивания, в первую очередь из-за изомеризации пролина , и они должны пройти через ряд промежуточных состояний, таких как контрольные точки, прежде чем процесс завершится. С другой стороны, очень маленькие однодоменные белки длиной до сотни аминокислот обычно складываются за одну стадию. Временные шкалы в миллисекунды являются нормой, и самые быстрые из известных реакций сворачивания белка завершаются в течение нескольких микросекунд.

Понимание и моделирование процесса сворачивания белков было важной задачей вычислительной биологии с конца 1960-х годов.

Процесс сворачивания белка

Первичная структура

Первичная структура белка , его линейной аминокислотной последовательности, определяет свою нативную конформацию. Конкретные аминокислотные остатки и их положение в полипептидной цепи являются определяющими факторами, для которых части белка плотно складываются вместе и образуют его трехмерную конформацию. Аминокислотный состав не так важен, как последовательность. Однако существенным фактом сворачивания остается то, что аминокислотная последовательность каждого белка содержит информацию, которая определяет как нативную структуру, так и путь достижения этого состояния. Это не означает, что почти идентичные аминокислотные последовательности всегда складываются одинаково. Конформации различаются также в зависимости от факторов окружающей среды; похожие белки складываются по-разному в зависимости от того, где они находятся.

Вторичная структура

Альфа - спирали образование спиральной
Антипараллельный бета-гофрированный лист, демонстрирующий водородные связи в основной цепи

Формирование вторичной структуры - это первый шаг в процессе сворачивания белка, который принимает свою нативную структуру. Для вторичной структуры характерны структуры, известные как альфа-спирали и бета-листы, которые быстро складываются, потому что они стабилизируются внутримолекулярными водородными связями , как впервые охарактеризовал Линус Полинг . Образование внутримолекулярных водородных связей вносит еще один важный вклад в стабильность белка. α-Спирали образованы водородными связями основной цепи и образуют спиральную форму (см. рисунок справа). Β-гофрированный лист - это структура, которая формируется, когда основная цепь изгибается над собой, образуя водородные связи (как показано на рисунке слева). Водородные связи находятся между амидным водородом и карбонильным кислородом пептидной связи . Существуют антипараллельные β-складчатые листы и параллельные β-складчатые листы, где стабильность водородных связей более сильна в антипараллельном β-листе, поскольку он связывает водородные связи с идеальным углом 180 градусов по сравнению с наклонными водородными связями, образованными параллельными листами.

Третичная структура

Альфа-спирали и бета-складчатые листы могут быть амфипатическими по своей природе или содержать гидрофильную часть и гидрофобную часть. Это свойство вторичных структур помогает в третичной структуре белка, в которой происходит сворачивание, так что гидрофильные стороны обращены к водной среде, окружающей белок, а гидрофобные стороны обращены к гидрофобному ядру белка. Вторичная структура иерархически уступает место формированию третичной структуры. Как только третичная структура белка сформирована и стабилизируется за счет гидрофобных взаимодействий, может также возникнуть ковалентное связывание в форме дисульфидных мостиков, образованных между двумя остатками цистеина. Третичная структура белка включает одну полипептидную цепь; однако дополнительные взаимодействия свернутых полипептидных цепей приводят к образованию четвертичной структуры.

Четвертичная структура

Третичная структура может уступить место образованию четвертичной структуры в некоторых белках, которая обычно включает «сборку» или «совместную сборку» субъединиц, которые уже свернулись; другими словами, несколько полипептидных цепей могут взаимодействовать с образованием полностью функционального четвертичного белка.

Движущие силы сворачивания белка

Обобщены все формы структуры белка.

Сворачивание - это спонтанный процесс, который в основном управляется гидрофобными взаимодействиями, образованием внутримолекулярных водородных связей , силами Ван-дер-Ваальса , и ему противостоит конформационная энтропия . Процесс складывания часто начинается со-поступательно , так что N-конец белка начинает складывать в то время как С-концевой части белка все еще синтезируется на рибосоме ; однако молекула белка может самопроизвольно складываться во время или после биосинтеза . Хотя эти макромолекулы можно рассматривать как « сворачивающиеся сами по себе », процесс также зависит от растворителя ( вода или липидный бислой ), концентрации солей , pH , температуры , возможного присутствия кофакторов и молекулярных шаперонов .

Белки будут иметь ограничения на их способность к складыванию из-за ограниченных углов изгиба или возможных конформаций. Эти допустимые углы сворачивания белка описываются двумерным графиком, известным как график Рамачандрана , изображенным с углами допустимого вращения в фунтах на квадратный дюйм и фи.

Гидрофобный эффект

Гидрофобный коллапс . В компактной складке (справа) гидрофобные аминокислоты (показаны черными сферами) схлопываются к центру, чтобы защитить себя от водной среды.

Сворачивание белка должно быть термодинамически благоприятным внутри клетки, чтобы реакция была спонтанной. Поскольку известно, что сворачивание белка является спонтанной реакцией, оно должно принимать отрицательное значение свободной энергии Гиббса . Свободная энергия Гиббса при сворачивании белка напрямую связана с энтальпией и энтропией . Для возникновения отрицательной дельта G и для того, чтобы сворачивание белка стало термодинамически благоприятным, тогда либо энтальпия, либо энтропия, либо оба условия должны быть благоприятными.

Энтропия уменьшается по мере того, как молекулы воды становятся более упорядоченными рядом с гидрофобным растворенным веществом.

Сведение к минимуму количества гидрофобных боковых цепей, подверженных воздействию воды, является важной движущей силой процесса складывания. Гидрофобный эффект - это явление, при котором гидрофобные цепи белка схлопываются в ядро ​​белка (вдали от гидрофильной среды). В водной среде молекулы воды имеют тенденцию к агрегированию вокруг гидрофобных областей или боковых цепей белка, создавая водные оболочки из упорядоченных молекул воды. Упорядочение молекул воды вокруг гидрофобной области увеличивает порядок в системе и, следовательно, способствует отрицательному изменению энтропии (уменьшению энтропии в системе). Молекулы воды фиксируются в этих водных клетках, что приводит к гидрофобному коллапсу или сворачиванию внутрь гидрофобных групп. Гидрофобный коллапс возвращает энтропию в систему за счет разрушения водяных клеток, что освобождает упорядоченные молекулы воды. Множество гидрофобных групп, взаимодействующих внутри ядра глобулярно свернутого белка, вносит значительный вклад в стабильность белка после сворачивания из-за сильно накопленных сил Ван-дер-Ваальса (особенно сил Лондонской дисперсии ). Гидрофобный эффект существует как движущая сила в термодинамике , только если есть наличие водной среды с амфифильной молекулой , содержащей большую гидрофобной областью. Прочность водородных связей зависит от их окружения; таким образом, водородные связи, заключенные в гидрофобное ядро, вносят больший вклад, чем водородные связи, находящиеся в водной среде, для стабильности нативного состояния.

В белках с глобулярными складками гидрофобные аминокислоты имеют тенденцию быть вкрапленными вдоль первичной последовательности, а не случайным образом распределены или сгруппированы вместе. Однако белки, которые недавно родились de novo и которые имеют тенденцию быть внутренне неупорядоченными , демонстрируют противоположный паттерн кластеризации гидрофобных аминокислот вдоль первичной последовательности.

Шапероны

Пример небольшого эукариотического белка теплового шока

Молекулярные шапероны - это класс белков, которые помогают в правильной укладке других белков in vivo . Шапероны существуют во всех клеточных компартментах и ​​взаимодействуют с полипептидной цепью, чтобы позволить сформироваться нативной трехмерной конформации белка; однако сами шапероны не включены в окончательную структуру белка, которому они помогают. Шапероны могут способствовать сворачиванию, даже когда возникающий полипептид синтезируется рибосомой. Молекулярные шапероны действуют путем связывания для стабилизации нестабильной в других отношениях структуры белка в его пути фолдинга, но шапероны не содержат необходимой информации, чтобы знать правильную нативную структуру белка, которому они помогают; скорее, шапероны работают, предотвращая неправильные складчатые конформации. Таким образом, шапероны на самом деле не увеличивают частоту отдельных шагов, участвующих в пути сворачивания к нативной структуре; вместо этого они работают, уменьшая возможные нежелательные агрегации полипептидной цепи, которые в противном случае могли бы замедлить поиск подходящего промежуточного соединения, и они обеспечивают более эффективный путь для полипептидной цепи, чтобы принять правильные конформации. Шапероны не следует путать с белками- катализаторами сворачивания , которые катализируют химические реакции, ответственные за медленные шаги в путях сворачивания. Примерами катализаторов фолдинга являются протеин- дисульфидные изомеразы и пептидил-пролилизомеразы, которые могут участвовать в образовании дисульфидных связей или взаимном превращении цис- и транс-стереоизомеров пептидной группы. Показано, что шапероны имеют решающее значение в процессе сворачивания белка in vivo, потому что они предоставляют белку помощь, необходимую для принятия его надлежащих выравниваний и конформаций, достаточно эффективно, чтобы стать «биологически релевантными». Это означает, что полипептидная цепь теоретически может складываться в свою нативную структуру без помощи шаперонов, как продемонстрировали эксперименты по укладке белков, проведенные in vitro ; однако этот процесс оказывается слишком неэффективным или слишком медленным, чтобы существовать в биологических системах; следовательно, шапероны необходимы для сворачивания белков in vivo. Наряду со своей ролью в содействии формированию нативной структуры, шапероны, как было показано, участвуют в различных ролях, таких как транспорт белков, деградация, и даже позволяют денатурированным протеинам, подвергающимся воздействию определенных внешних денатурирующих факторов, возможность преобразоваться в их правильные нативные структуры.

Полностью денатурированный белок не имеет ни третичной, ни вторичной структуры и существует в виде так называемой случайной спирали . При определенных условиях некоторые белки могут складываться заново; однако во многих случаях денатурация необратима. Клетки иногда защищают свои белки от денатурирующего воздействия тепла с помощью ферментов, известных как белки теплового шока (тип шаперона), которые помогают другим белкам как в сворачивании, так и в том, чтобы оставаться свернутыми. Белки теплового шока были обнаружены у всех исследованных видов, от бактерий до людей, что позволяет предположить, что они эволюционировали очень рано и выполняют важную функцию. Некоторые белки вообще никогда не сворачиваются в клетках, кроме как с помощью шаперонов, которые либо изолируют отдельные белки, чтобы их сворачивание не прерывалось взаимодействиями с другими белками, либо помогают разворачивать неправильно свернутые белки, позволяя им повторно складываться в правильную нативную структуру. Эта функция имеет решающее значение для предотвращения риска осаждения в нерастворимые аморфные агрегаты. К внешним факторам, участвующим в денатурации белка или нарушении нативного состояния, относятся температура, внешние поля (электрические, магнитные), скученность молекул и даже ограничение пространства (т. Е. Ограничение), которые могут иметь большое влияние на сворачивание белков. Высокие концентрации растворенных веществ , экстремальные значения pH , механические силы и присутствие химических денатурирующих веществ также могут способствовать денатурации белка. Эти отдельные факторы вместе классифицируются как стрессы. Показано, что шапероны существуют в возрастающих концентрациях во время клеточного стресса и помогают правильному сворачиванию возникающих белков, а также денатурированных или неправильно свернутых.

При некоторых условиях белки не сворачиваются в свои биохимически функциональные формы. Температуры выше или ниже диапазона, в котором обычно живут клетки, вызывают разворачивание или денатурирование термически нестабильных белков (вот почему кипячение делает яичный белок непрозрачным). Однако термостабильность белков далеко не постоянна; например, были обнаружены гипертермофильные бактерии , которые растут при температурах до 122 ° C, что, конечно, требует, чтобы их полный набор жизненно важных белков и белковых ансамблей был стабильным при этой температуре или выше.

Бактерия E. coli является хозяином для бактериофага T4 , а кодируемый фагом белок gp31 ( P17313 ), по-видимому, структурно и функционально гомологичен белку- шаперону E. coli GroES и способен замещать его при сборке вирусных частиц бактериофага T4 во время инфекционное заболевание. Подобно GroES, gp31 образует стабильный комплекс с шаперонином GroEL, который абсолютно необходим для сворачивания и сборки in vivo основного капсидного белка бактериофага T4 gp23.

Сложите переключение

Некоторые белки имеют несколько нативных структур и меняют свою складку в зависимости от некоторых внешних факторов. Например, переключатели белка KaiB складываются в течение дня , действуя как часы для цианобактерий. Было подсчитано, что около 0,5–4% белков PDB ( Protein Data Bank ) переключают складки.

Неправильная упаковка белка и нейродегенеративное заболевание

Считается, что белок неправильно свернут, если он не может достичь своего нормального нативного состояния. Это может быть связано с мутациями в аминокислотной последовательности или нарушением нормального процесса фолдинга внешними факторами. Неправильно свернутый белок обычно содержит β-листы , которые организованы в надмолекулярную структуру, известную как перекрестная β-структура. Эти богатые β-слоями ансамбли очень стабильны, очень нерастворимы и обычно устойчивы к протеолизу. Структурная стабильность этих фибриллярных ансамблей обусловлена ​​обширными взаимодействиями между мономерами белка, образованными водородными связями основной цепи между их β-цепями. Неправильная укладка белков может вызвать дальнейшую неправильную укладку и накопление других белков в агрегаты или олигомеры. Повышенный уровень агрегированных белков в клетке приводит к образованию амилоидоподобных структур, которые могут вызывать дегенеративные нарушения и гибель клеток. Амилоиды представляют собой фибриллярные структуры, которые содержат межмолекулярные водородные связи, которые очень нерастворимы и образованы из преобразованных белковых агрегатов. Следовательно, протеасомный путь может быть недостаточно эффективным для разрушения неправильно свернутых белков до агрегации. Неправильно свернутые белки могут взаимодействовать друг с другом и образовывать структурированные агрегаты и приобретать токсичность за счет межмолекулярных взаимодействий.

Агрегированные белки связаны с прион о связанных заболеваний , таких как болезнь Крейтцфельда-Якоба , коровьей губчатой энцефалопатии (коровьего бешенства), амилоидных связанных заболеваний , таких как болезнь Альцгеймера и семейная амилоида кардиомиопатии или полинейропатия , а также внутриклеточных заболеваний агрегации , таких как болезнь Хантингтона и Болезнь Паркинсона . Эти возрастные дегенеративные заболевания связаны с агрегацией неправильно свернутых белков в нерастворимые внеклеточные агрегаты и / или внутриклеточные включения, включая поперечно-β- амилоидные фибриллы . Не совсем ясно, являются ли агрегаты причиной или просто отражением потери гомеостаза белка, баланса между синтезом, сворачиванием, агрегацией и обменом белка. Недавно Европейское агентство по лекарственным средствам одобрило использование Tafamidis или Vyndaqel (кинетический стабилизатор тетрамерного транстиретина) для лечения заболеваний, связанных с амилоидом транстиретина. Это говорит о том, что процесс образования амилоидных фибрилл (а не самих фибрилл) вызывает дегенерацию постмитотической ткани при амилоидных заболеваниях человека. Неправильное сворачивание и чрезмерная деградация вместо складывания и функция приводит к ряду протеинопатии заболеваний , таким как антитрипсин -associated эмфиземы , кистозный фиброз и болезни накопления лизосомных , где потеря функции является источником расстройства. В то время как заместительная протеиновая терапия исторически использовалась для коррекции последних нарушений, новый подход заключается в использовании фармацевтических шаперонов для сворачивания мутантных белков, чтобы сделать их функциональными.

Экспериментальные методы изучения сворачивания белков

В то время как выводы о сворачивании белков могут быть сделаны посредством исследований мутаций , обычно экспериментальные методы изучения сворачивания белков основаны на постепенном разворачивании или сворачивании белков и наблюдении конформационных изменений с использованием стандартных некристаллографических методов.

Рентгеновская кристаллография

Рентгеновская кристаллография - один из наиболее эффективных и важных методов попытки расшифровать трехмерную конфигурацию свернутого белка. Для проведения рентгеновской кристаллографии исследуемый белок должен находиться внутри кристаллической решетки. Чтобы поместить белок в кристаллическую решетку, необходимо иметь подходящий растворитель для кристаллизации, получить чистый белок на перенасыщенных уровнях в растворе и осаждать кристаллы в растворе. После того, как белок кристаллизован, рентгеновские лучи могут быть сконцентрированы через кристаллическую решетку, которая будет дифракционировать лучи или направлять их наружу в различных направлениях. Эти выходящие лучи соотносятся с конкретной трехмерной конфигурацией белка, заключенного внутри. Рентгеновские лучи специфически взаимодействуют с электронными облаками, окружающими отдельные атомы в кристаллической решетке белка, и создают различимую дифракционную картину. Только связав облака электронной плотности с амплитудой рентгеновских лучей, можно прочитать эту картину и сделать предположения о фазах или фазовых углах, которые усложняют этот метод. Без связи, установленной с помощью математической основы, известной как преобразование Фурье , « фазовая проблема » сделала бы предсказание дифракционных картин очень трудным. Новые методы, такие как множественное изоморфное замещение, используют присутствие иона тяжелого металла для более предсказуемой дифракции рентгеновских лучей, уменьшения количества задействованных переменных и решения фазовой проблемы.

Флуоресцентная спектроскопия

Флуоресцентная спектроскопия - это высокочувствительный метод изучения состояния сворачивания белков. Три аминокислоты, фенилаланин (Phe), тирозин (Tyr) и триптофан (Trp), обладают собственными флуоресцентными свойствами, но экспериментально используются только Tyr и Trp, поскольку их квантовые выходы достаточно высоки, чтобы давать хорошие сигналы флуоресценции. И Trp, и Tyr возбуждаются на длине волны 280 нм, тогда как только Trp возбуждается на длине волны 295 нм. Из-за их ароматического характера остатки Trp и Tyr часто обнаруживаются полностью или частично погруженными в гидрофобное ядро ​​белков, на границе раздела между двумя доменами белка или на границе раздела между субъединицами олигомерных белков. В этой аполярной среде они имеют высокий квантовый выход и, следовательно, высокую интенсивность флуоресценции. При нарушении третичной или четвертичной структуры белка эти боковые цепи становятся более подверженными гидрофильному окружению растворителя, и их квантовые выходы уменьшаются, что приводит к низкой интенсивности флуоресценции. Для остатков Trp длина волны их максимального излучения флуоресценции также зависит от их окружения.

Флуоресцентная спектроскопия может использоваться для характеристики равновесного разворачивания белков путем измерения изменения интенсивности флуоресцентного излучения или длины волны максимального излучения в зависимости от значения денатуранта. Денатурант может быть химической молекулой (мочевина, гидрохлорид гуанидиния), температурой, pH, давлением и т. Д. Равновесие между различными, но дискретными состояниями белка, то есть нативным состоянием, промежуточными состояниями, развернутым состоянием, зависит от значения денатурирующего агента; следовательно, глобальный сигнал флуоресценции их равновесной смеси также зависит от этого значения. Таким образом, получают профиль, связывающий глобальный белковый сигнал со значением денатуранта. Профиль равновесного развертывания может позволить обнаруживать и идентифицировать промежуточные звенья развертывания. Общие уравнения были разработаны Hugues Bedouelle для получения термодинамических параметров, которые характеризуют развертывающиеся равновесия для гомомерных или гетеромерных белков, вплоть до тримеров и потенциально тетрамеров, из таких профилей. Флуоресцентную спектроскопию можно комбинировать с устройствами для быстрого перемешивания, такими как остановленный поток , для измерения кинетики сворачивания белка, построения шевронного графика и анализа значения Phi .

Круговой дихроизм

Круговой дихроизм - один из самых общих и основных инструментов для изучения сворачивания белков. Спектроскопия кругового дихроизма измеряет поглощение света с круговой поляризацией . В белках такие структуры, как альфа-спирали и бета-листы, являются хиральными и поэтому поглощают такой свет. Поглощение этого света действует как маркер степени свернутости белкового ансамбля. Этот метод был использован для измерения равновесного развертывания белка путем измерения изменения этого поглощения в зависимости от концентрации денатуранта или температуры . Расплав денатуранта измеряет свободную энергию разворачивания, а также значение m белка или зависимость от денатуранта. Температура плавления измеряет температуру денатурации (Tm) белка. Что касается флуоресцентной спектроскопии, спектроскопию кругового дихроизма можно комбинировать с устройствами быстрого перемешивания, такими как остановленный поток, для измерения кинетики сворачивания белка и создания графиков шевронов .

Колебательный круговой дихроизм белков

Более поздние разработки методов колебательного кругового дихроизма (VCD) для белков, в которых в настоящее время используются инструменты преобразования Фурье (FT), предоставляют мощные средства для определения конформаций белков в растворе даже для очень больших молекул белка. Такие исследования белков с помощью VCD можно комбинировать с данными дифракции рентгеновских лучей для кристаллов белка, данными FT-IR для растворов белков в тяжелой воде (D 2 O) или квантовыми вычислениями .

Спектроскопия ядерного магнитного резонанса белков

Ядерно- магнитный резонанс (ЯМР) белка позволяет собирать структурные данные белка путем создания магнитного поля через образцы концентрированного белка. В ЯМР, в зависимости от химической среды, определенные ядра будут поглощать определенные радиочастоты. Поскольку структурные изменения белка происходят в масштабе времени от нс до мс, ЯМР особенно приспособлен для изучения промежуточных структур во временных масштабах от пс до с. Некоторые из основных методов изучения структуры белков и структурных изменений нефолдинговых белков включают COSY , TOCSYHSQC , временную релаксацию (T1 и T2) и NOE . NOE особенно полезен, потому что наблюдается перенос намагниченности между пространственно проксимальными атомами водорода. Различные эксперименты ЯМР имеют разную степень чувствительности шкалы времени, которая подходит для различных структурных изменений белка. NOE может улавливать колебания связей или повороты боковых цепей, однако NOE слишком чувствителен, чтобы улавливать сворачивание белка, потому что это происходит в более крупном масштабе времени.

Шкала времени структурных изменений белка соответствует экспериментам ЯМР. Для сворачивания белка, CPMG Relaxation Dispersion (CPMG RD) и переноса насыщения химического обмена (CEST) собирают данные в соответствующем временном масштабе.

Поскольку сворачивание белка происходит примерно за 50-3000 с -1, CPMG-релаксационная дисперсия и перенос насыщения химическим обменом стали одними из основных методов ЯМР-анализа сворачивания. Кроме того, оба метода используются для обнаружения возбужденных промежуточных состояний в ландшафте сворачивания белков. Для этого CPMG релаксационная дисперсия использует явление спинового эха . Этот метод подвергает ядра-мишени импульсу 90, за которым следуют один или несколько импульсов 180. Когда ядра перефокусируются, широкое распределение указывает на то, что ядра-мишени находятся в промежуточном возбужденном состоянии. Посмотрев на графики дисперсии релаксации, данные собирают информацию о термодинамике и кинетике между возбужденным и заземленным. Saturation Transfer измеряет изменения сигнала от основного состояния, когда возбужденные состояния становятся возмущенными. Он использует слабое радиочастотное излучение для насыщения возбужденного состояния конкретного ядра, которое переводит его насыщение в основное состояние. Этот сигнал усиливается за счет уменьшения намагниченности (и сигнала) основного состояния.

Основное ограничение ЯМР заключается в том, что его разрешение снижается с белками, размер которых превышает 25 кДа, и не так детализирован, как рентгеновская кристаллография . Кроме того, анализ ЯМР белков довольно сложен и может предложить несколько решений из одного и того же ЯМР-спектра.

В исследовании, посвященном сворачиванию бокового амиотрофического склероза с участием белка SOD1 , изучались возбужденные промежуточные соединения с релаксационной дисперсией и переносом насыщения. SOD1 ранее был связан со многими мутантами, вызывающими заболевание, которые, как предполагалось, участвовали в агрегации белков, однако механизм до сих пор был неизвестен. С помощью экспериментов по релаксационной дисперсии и переносу насыщения многие возбужденные промежуточные состояния были обнаружены неправильной упаковкой у мутантов SOD1.

Двухполяризационная интерферометрия

Интерферометрия с двойной поляризацией - это поверхностный метод измерения оптических свойств молекулярных слоев. При использовании для характеристики сворачивания протеина он измеряет конформацию путем определения общего размера монослоя протеина и его плотности в реальном времени с разрешением ниже Ангстрема, хотя измерение кинетики сворачивания протеина в реальном времени ограничивается процессами, которые происходят медленнее ~ 10 Гц. Как и в случае с круговым дихроизмом , стимулом к ​​сворачиванию может быть денатурирующий агент или температура .

Исследования складчатости с высоким временным разрешением

В последние годы изучение сворачивания белков значительно продвинулось вперед благодаря развитию быстрых методов с временным разрешением. Экспериментаторы быстро запускают сворачивание образца развернутого белка и наблюдают за полученной динамикой . Используемые быстрые методы включают рассеяние нейтронов , сверхбыстрое перемешивание растворов, фотохимические методы и лазерную спектроскопию скачков температуры . Среди многих ученых, которые внесли свой вклад в разработку этих методов, - Джереми Кук, Генрих Родер, Гарри Грей , Мартин Грюбеле , Брайан Дайер, Уильям Итон, Шина Рэдфорд , Крис Добсон , Алан Фершт , Бенгт Нелтинг и Ларс Конерманн.

Протеолиз

Протеолиз обычно используется для зондирования фракции, развернутой в широком диапазоне условий раствора (например, быстрый параллельный протеолиз (FASTpp) .

Силовая спектроскопия одиночных молекул

Методы одиночных молекул, такие как оптический пинцет и АСМ, использовались для понимания механизмов сворачивания белков как изолированных белков, так и белков с шаперонами. Оптический пинцет использовался для вытягивания отдельных белковых молекул с их C- и N-концов и их разворачивания, чтобы можно было изучить последующую рефолдинг. Этот метод позволяет измерять скорость сворачивания на уровне одной молекулы; например, оптический пинцет недавно был применен для изучения сворачивания и разворачивания белков, участвующих в свертывании крови. Фактор фон Виллебранда (vWF) - это белок, играющий важную роль в процессе образования тромба. С помощью оптического пинцета для измерения одиночных молекул было обнаружено, что связанный с кальцием vWF действует как датчик силы сдвига в крови. Сдвигающая сила приводит к разворачиванию домена A2 vWF, скорость рефолдинга которого резко увеличивается в присутствии кальция. Недавно было также показано, что простой домен src SH3 получает доступ к множественным путям разворачивания под действием силы.

Биотиновая окраска

Биотиновая окраска позволяет делать снимки (не) свернутых белков в зависимости от состояния клеток. «Картина» биотина демонстрирует предвзятость по отношению к предсказанным внутренне неупорядоченным белкам .

Вычислительные исследования сворачивания белков

Вычислительные исследования сворачивания белка включают три основных аспекта, связанных с предсказанием стабильности, кинетики и структуры белка. В недавнем обзоре обобщены доступные вычислительные методы фолдинга белков.

Парадокс Левинталя

В 1969 году Сайрус Левинталь отметил, что из-за очень большого количества степеней свободы в развернутой полипептидной цепи молекула имеет астрономическое количество возможных конформаций. В одной из его статей была сделана оценка в 3 300 или 10 143 человека . Парадокс Левинталя - это мысленный эксперимент, основанный на наблюдении, что если бы белок был свернут путем последовательной выборки всех возможных конформаций, для этого потребовалось бы астрономическое количество времени, даже если бы конформации брались с большой скоростью (на наносекунду). или пикосекундный масштаб). Основываясь на наблюдении, что белки складываются намного быстрее, чем это, Левинталь затем предположил, что случайного конформационного поиска не происходит, и, следовательно, белок должен складываться через серию метастабильных промежуточных состояний .

Энергетический ландшафт сворачивания белков

Энергетическая воронка, по которой развернутая полипептидная цепь принимает свою нативную структуру.

Конфигурационное пространство белка во время складывания можно визуализировать как энергетический ландшафт . Согласно Джозефу Брингельсону и Питеру Волинсу , белки следуют принципу минимального разочарования, что означает, что естественно эволюционировавшие белки оптимизировали свои энергетические ландшафты сворачивания, и что природа выбрала аминокислотные последовательности так, чтобы сложенное состояние белка было достаточно стабильным. К тому же приобретение сложенного состояния должно было стать достаточно быстрым процессом. Несмотря на то, что природа снизила уровень расстройства белков, некоторая его степень сохраняется до сих пор, что можно наблюдать при наличии локальных минимумов в энергетическом ландшафте белков.

Следствием этих эволюционно выбранных последовательностей является то, что обычно считается, что белки имеют глобальные «направляемые энергетические ландшафты» (придуманные Хосе Онучиком ), которые в значительной степени ориентированы на нативное состояние. Этот ландшафт « складывающейся воронки » позволяет белку сворачиваться до нативного состояния посредством любого из большого количества путей и промежуточных продуктов, а не ограничиваться одним механизмом. Теория подтверждается как компьютерным моделированием модельных белков, так и экспериментальными исследованиями, и она использовалась для улучшения методов прогнозирования и проектирования структуры белков . Описание сворачивания белков с помощью выравнивающего ландшафта свободной энергии также согласуется со 2-м законом термодинамики. С физической точки зрения представление о ландшафтах с точки зрения визуализируемого потенциала или поверхностей полной энергии просто с максимумами, седловыми точками, минимумами и воронками, скорее как географические ландшафты, возможно, немного вводит в заблуждение. Соответствующее описание - действительно многомерное фазовое пространство, в котором многообразия могут принимать множество более сложных топологических форм.

Развернутая полипептидная цепь начинается на вершине воронки, где она может принимать наибольшее количество развернутых вариаций и находится в своем наивысшем энергетическом состоянии. Подобные энергетические ландшафты указывают на то, что существует большое количество начальных возможностей, но возможно только одно естественное состояние; однако он не раскрывает многочисленных возможных путей сворачивания. Другая молекула одного и того же конкретного белка может быть способна следовать незначительно разным путям сворачивания в поисках разных более низкоэнергетических промежуточных продуктов, пока достигается одна и та же нативная структура. Различные пути могут иметь разную частоту использования в зависимости от термодинамической благоприятности каждого пути. Это означает, что если один путь окажется более термодинамически более благоприятным, чем другой, он, вероятно, будет чаще использоваться в поисках нативной структуры. Когда белок начинает сворачиваться и принимать различные формы, он всегда ищет более термодинамически благоприятную структуру, чем раньше, и, таким образом, продолжает движение по энергетической воронке. Образование вторичных структур является убедительным признаком повышенной стабильности внутри белка, и только одна комбинация вторичных структур, предполагаемая основной цепью полипептида, будет иметь самую низкую энергию и, следовательно, будет присутствовать в нативном состоянии белка. Среди первых структур, которые образуются после того, как полипептид начинает складываться, являются альфа-спирали и бета-витки, где альфа-спирали могут формироваться всего за 100 наносекунд, а бета-повороты - за 1 микросекунду.

В ландшафте энергетической воронки существует седловая точка, где находится переходное состояние для конкретного белка. Переходное состояние на диаграмме энергетической воронки - это конформация, которую должна принять каждая молекула этого белка, если белок желает, наконец, принять нативную структуру. Ни один белок не может принять нативную структуру, не пройдя сначала через переходное состояние. Переходное состояние можно назвать вариантом или преждевременной формой исходного состояния, а не просто еще одним промежуточным этапом. Показано, что сворачивание переходного состояния определяет скорость, и даже несмотря на то, что оно существует в состоянии с более высокой энергией, чем естественная складка, оно очень напоминает естественную структуру. Внутри переходного состояния существует ядро, вокруг которого белок может сворачиваться, образованное процессом, называемым «зародышевая конденсация», когда структура начинает схлопываться на ядро.

Моделирование сворачивания белков

Folding @ home использует модели состояния Маркова , подобные изображенной на схеме, чтобы смоделировать возможные формы и пути сворачивания, которые белок может принять, когда он конденсируется из своего начального случайно свернутого состояния (слева) в свою естественную трехмерную структуру (справа).

Методы de novo или ab initio для компьютерного предсказания структуры белка могут использоваться для моделирования различных аспектов сворачивания белка. Молекулярная динамика (MD) использовалась при моделировании сворачивания и динамики белков in silico . Первые симуляции равновесного складывания были выполнены с использованием неявной модели растворителя и зонтичной выборки . Из-за вычислительных затрат моделирование сворачивания ab initio MD с явной водой ограничено пептидами и очень маленькими белками. МД-моделирование более крупных белков остается ограниченным динамикой экспериментальной структуры или ее высокотемпературным развертыванием. К долгосрочным процессам сворачивания (более 1 миллисекунды), таким как сворачивание белков небольшого размера (около 50 остатков) или больше, можно получить доступ с помощью крупнозернистых моделей .

Несколько крупномасштабных вычислительных проектов, таких как Rosetta @ home , Folding @ home и Foldit , посвящены фолдингу целевого белка.

Моделирование длинных непрерывных траекторий было выполнено на Anton , суперкомпьютере с массовым параллелизмом, спроектированном и построенном на базе специализированных ASIC и межсоединений DE Shaw Research . Самый длинный опубликованный результат моделирования, выполненного с использованием Антона, - это имитация NTL9 за 2,936 миллисекунды при 355 К.

Смотрите также

использованная литература

внешние ссылки